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絕對定量轉(zhuǎn)錄組測序

目    錄
  • 產(chǎn)品介紹
  • 常見問題
  • 經(jīng)典案例
  • 結(jié)果展示

背景簡介 

常規(guī)轉(zhuǎn)錄組測序由于文庫PCR擴增偏好性,所有序列并不會被同比例放大,因而造成測序定量結(jié)果與樣本中轉(zhuǎn)錄本的原始豐度不一致,導致差異基因篩選不準確(圖1)。這也是造成qPCR驗證測序結(jié)果不一致的主要原因。聯(lián)川生物推出的絕對定量轉(zhuǎn)錄組測序,采用主流UMI標記技術[1,2,3],通過UMI標記每一條序列,可以消除PCR擴增偏好對定量的干擾,真實反映樣本中轉(zhuǎn)錄本的表達豐度(圖2)。在文庫PCR擴增和測序過程中難免會引入錯誤的堿基,具有相同UMI標記的序列可以基于多序列比對來糾正PCR擴增和測序過程中引入的錯誤,確保獲得轉(zhuǎn)錄本的真實序列(見圖3)。 

圖1 PCR擴增產(chǎn)生的duplication顯著干擾準確定量

圖2 UMI標記技術消除duplication干擾

圖3 UMI標記技術糾正序列錯誤
 

技術優(yōu)勢 

真實定量:采用UMI標記技術,每一條序列都被唯一標識,保留序列真重復,去除PCR擴增假重復,真實反映樣本中轉(zhuǎn)錄本的表達豐度。真實序列:具有相同UMI標記的序列可以基于多序列比對來糾正PCR擴增和測序過程中引入的錯誤, 確保獲得轉(zhuǎn)錄本的真實序列。

技術路線 

分析內(nèi)容 


 
樣本類型 

細胞,組織,全血,血清,血漿,總RNA等
建議總RNA起始量:2 μg,最低1 μg,濃度≥50 ng/μL


參考文獻
 1.Shiroguchi K, et al. Digital RNA sequencing minimizes sequence-dependent bias and amplification noise with optimized single-molecule barcodes. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Jan 24;109(4):1347-52.2.Kivioja T, et al. Counting absolute numbers of molecules using unique molecular identifiers. Nat Methods. 2011, 9(1):72-43.Saiful Islam, et al. Quantitative single-cell RNA-seq with unique molecular identifiers. Nature Methods 2014, 11:163-166.

Q1:轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果上調(diào),而qPCR結(jié)果下調(diào),問題出在哪兒?

A1:主要有這6個原因:1)文庫PCR擴增偏好,2)你驗證的分子不對,3)用不同批次的樣品做驗證,4)用不同的樣本類型做驗證,5)拿低表達或差異不顯著的基因做驗證,6)樣本比對關系搞反。查看詳情

Q2:使用絕對定量轉(zhuǎn)錄組測序?qū)ξ矣惺裁磶椭?/h3>

A2:使用絕對定量轉(zhuǎn)錄組測序,助您篩選出真實的差異表達基因,讓你的時間不再花在假陽性結(jié)果的驗證上,更快地開展下游功能驗證實驗,快人一步地發(fā)表研究成果。
 

使用單分子標簽的RNA-Seq會最小化序列偏好和擴增噪音


研究內(nèi)容

這項工作討論了如何最小化PCR擴增偏好性(就是Duplication)對測序數(shù)據(jù),特別是低拷貝序列,定量分析的干擾。研究團隊開發(fā)出了一種稱為Digital RNA sequencing的方法:序列在反轉(zhuǎn)錄后,加入大量的標簽(barcode),幾乎每個cDNA都被唯一的barcode標記,然后進行PCR擴增獲得轉(zhuǎn)錄組測序文庫(見下圖)。由于序列是被barcode唯一標記的,計算序列拷貝數(shù)時,不再直接統(tǒng)計同一種reads的數(shù)量,而是統(tǒng)計每種reads有多少個unique的barcode。而具有相同barcode的同一種reads,無論有多少拷貝數(shù),都只計作一個拷貝,即來自PCR擴增的假重復(Duplication)被有效去除。
可以簡單地認為,在樣本中cDNA1有3個拷貝,cDNA2有2個拷貝,比例為3:2,然后用大量不同的barcode標記這5條序列,每條序列都被unique的barcode標記,最后進行PCR擴增完成文庫制備。由于Duplication的存在,在沒有barcode標記的情況下,cDNA1經(jīng)擴增變成了9個拷貝,cDNA2變成了12個拷貝,比例變成了3:4,而兩者原始的比例是3:2;而標記了barcode的cDNA1和cDNA2,合并具有相同barcode的同種序列后,cDNA1和cDNA2仍保持原始的拷貝數(shù)和比例,此種方案下測序定量結(jié)果準確反映了樣本中序列的真實豐度和比例。


 

圖  標簽標記序列法去除Duplication的原理

參考文獻

Shiroguchi K, et al. Digital RNA sequencing minimizes sequence-dependent bias and amplification noise with optimized single-molecule barcodes. Proc Natl Acad Sci U S A. 2012 Jan 24;109(4):1347-52.
 

差異基因聚類分析熱圖
用于判斷基因在不同實驗條件下調(diào)控模式的聚類模式根據(jù)樣品基因表達譜的相近程度,將基因進行聚類分析,直觀地展示基因在不同樣品(或是不同處理)中的表達情況,由此獲取生物學相關信息。

差異顯著差異表達基因上下調(diào)頻數(shù)統(tǒng)計柱狀圖用于統(tǒng)計差異基因數(shù)目

差異表達基因分析火山圖
用于了解差異表達基因的整體分布情況。以log2(foldchange)為橫坐標,-log10(pvalue)為縱坐標,對差異表達分析中所有的基因繪制火山圖。其中橫坐標代表基因在不同樣本中差異表達倍數(shù)變化;縱坐標代表基因表達量變化差異的統(tǒng)計學顯著性。

差異基因GO富集柱狀圖
用于反映在生物過程(biological process)、細胞組分(cellular component)和分子功能(molecular function)富集的GO term上差異基因的個數(shù)分布情況。

GO功能富集散點圖
用于展示GO term的富集情況。Rich factor表示位于該GO的差異基因個數(shù)/位于該GO的總基因數(shù),Rich factor越大,GO富集程度越高。

皮爾森相關系數(shù)圖
用于反映生物學重復、樣本相關性,確保后續(xù)的差異基因分析得到更可靠的結(jié)果。

可變剪切統(tǒng)計圖
對該物種及其相應的測序樣品進行可變剪切事件的分類及統(tǒng)計。

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